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    无细胞蛋白表达技术的应用方向与发展趋势


    发布时间:

    2026-06-10

    在蛋白质工程与抗体偶联药物(ADC)研究中,如何实现对蛋白的“精准位点修饰”,一直是一个关键科学问题。传统蛋白修饰策略通常依赖对天然氨基酸侧链的随机反应,因此在修饰位点、修饰比例以及产物均一性方面往往存在一定不可控性,这也成为影响蛋白功能研究和药物开发的重要因素之一。

     

    近年来,一种基于遗传密码扩展(Genetic Code Expansion, GCE)的生物学策略逐渐受到关注。该方法通过重编程蛋白翻译体系,在蛋白合成过程中将非天然氨基酸定点引入到预设密码子位点,从而在“表达阶段”实现对蛋白结构的精确设计。与传统依赖后修饰反应的方式不同,这类方法将控制节点前移至蛋白生物合成过程本身,使蛋白修饰从“随机发生”转变为“在翻译层面可编程实现”,从而显著提升修饰的位点特异性与一致性。

     

    这一策略为抗体偶联、蛋白标记以及功能蛋白设计提供了一种更加精准和可控的生物学工具路径。本次直播将围绕非天然氨基酸定点插入技术的原理与应用展开,解析其在ADC开发与蛋白工程中的重要意义。


    无细胞蛋白表达技术(Cell-Free Protein Synthesis, CFPS)近年来在合成生物学与结构生物学领域发展迅速,正在从实验室工具逐渐演变为蛋白工程与药物研发的重要技术平台。其核心在于通过体外重构转录与翻译体系,实现目标蛋白的快速合成,从而绕开细胞内复杂调控网络的限制。

     

    图1|无细胞蛋白表达(CFPS)体系示意图(参考文献[3])

     

    传统细胞表达体系(如大肠杆菌、昆虫细胞及哺乳动物细胞)在蛋白表达中各具优势,但在膜蛋白或复杂蛋白制备过程中仍存在明显瓶颈,包括表达毒性、错误折叠及缺乏天然膜环境等问题。相比之下,CFPS体系由于其开放性,可以直接调控反应组分,在表达条件优化方面具有更高自由度。这一特性在膜蛋白研究中尤为关键。膜蛋白通常含有多个疏水跨膜结构域,在传统体系中极易失活或错误折叠,而在CFPS体系中可以通过加入去垢剂或纳米盘结构模拟天然膜环境,从而促进其正确折叠与功能保持。

     

     

    图2|纳米盘(Nanodisc)模拟膜环境示意图(参考文献 [4])

     

    例如在G蛋白偶联受体(GPCR)研究中,CFPS结合纳米盘体系已被证明能够显著提高蛋白稳定性与功能保持能力,为配体结合分析与结构解析提供高质量样品。在离子通道蛋白研究中,通过调控脂质组成,也可以有效改善膜插入效率与构象稳定性。随着冷冻电镜(Cryo-EM)技术的发展,结构生物学对高质量蛋白样品的需求进一步提高。CFPS体系能够与纳米盘体系结合,提供均一性更高的蛋白样品,从而显著缩短结构筛选周期。除结构生物学外,CFPS在蛋白工程与高通量筛选中的应用也日益广泛。由于其不依赖细胞生长,可以实现微量反应体系的并行化操作,用于蛋白突变体库筛选、定向进化及功能验证,从而显著提高设计—构建—测试-学习循环(DBTL cycle)的效率。在药物研发领域,CFPS同样展现出良好的应用潜力。例如在靶点蛋白制备、抗体筛选及小分子结合分析中,CFPS能够快速提供功能性蛋白,加速早期药物筛选流程,尤其适用于膜蛋白类靶点。尽管CFPS技术发展迅速,但仍面临一些挑战,例如复杂蛋白折叠效率、长链蛋白表达稳定性以及体系成本控制等问题。因此,当前研究重点集中在能量系统优化、分子伴侣引入以及膜模拟体系改进等方向。在这一技术演进过程中,围绕CFPS体系的工程化整合正在成为行业趋势。例如苏州珀罗汀生物科技有限公司,基于无细胞蛋白表达体系,结合膜蛋白研究需求,在去垢剂优化体系与纳米盘重构技术方面持续进行技术优化,为膜蛋白表达与结构研究提供更加稳定和可控的实验解决方案。这种从单一表达技术向系统化平台的延伸,也体现出CFPS正在向“蛋白研究基础设施”转变的趋势。

     

    苏州珀罗汀生物是一家专业的无细胞蛋白表达生物技术公司。公司拥有国家高层次领军人才、海归博士等人才组成的专业技术团队,以自主研发、独具特色的无细胞蛋白表达技术平台为依托,专业从事多肽、重组蛋白、基因工程抗体、重组疫苗以及大分子蛋白药物的研究和开发,同时为广大生物医药企业和研究机构提供无细胞蛋白表达产品、蛋白原料试剂及定制化服务。总体来看,无细胞蛋白表达技术正在从传统蛋白制备工具,逐步发展为支持结构生物学与药物研发的重要技术平台。随着体系优化与多技术融合的持续推进,其在膜蛋白研究及生物医药领域的应用潜力仍将不断拓展。

     

    参考文献


    [1] Shimizu Y, et al. Cell-free translation reconstituted with purified components. Nature Biotechnology, 2001.
     [2] Katzen F, Chang G, Kudlicki W. The past, present and future of cell-free protein synthesis. Trends in Biotechnology, 2005.
     [3] Silverman AD, Karim AS, Jewett MC. Cell-free gene expression: an expanded repertoire of applications. Nature Reviews Genetics, 2020.
     [4] Ritchie TK, et al. Reconstitution of membrane proteins in phospholipid bilayer nanodiscs. Methods in Enzymology, 2009.
     [5] Dörr JM, et al. The styrene–maleic acid copolymer: a versatile tool in membrane research. BBA, 2016.